哈佛大学Lee L. Rubin研究团队在《Nat Biotechnol》上发表了一项题为“Organoid culture promotes dedifferentiation of mouse myoblasts into stem cells capable of complete muscle regeneration”的研究，提出了一种从骨骼肌组织中生成体外衍生卫星细胞（idSCs）的方法。研究结果表明，idSCs可能为治疗遗传性肌肉疾病、创伤引起的肌肉损伤以及与年龄相关的肌肉无力提供一种可扩展的细胞来源。
研究背景与方法
研究团队发现，在三维培养条件下，肌母细胞可以逆转为具有类似卫星细胞状态的细胞。通过在旋转瓶中培养形成骨骼肌类器官（SkMOs），并调整培养条件，最终生成的SkMO细胞能够同时表达肌球蛋白重链（MyHC）和转录因子Pax7，这是维持干细胞特性的标志。
使用转基因小鼠模型，研究验证了SkMO中的GFP+细胞具有类似卫星细胞的特征，包括静止状态、小细胞体积和克隆生长能力。这些SkMO衍生的GFP+细胞不仅能够在体外形成克隆，还能分化为多核肌管。最终，这些细胞被称为idSCs，展示出在三维培养环境中重塑为卫星细胞的能力。
基因表达与表观基因组分析
通过多重RNA测序分析，研究比较了新鲜分离的卫星细胞、肌母细胞和体外生成的idSCs的转录特征。结果显示，idSCs在基因表达上与内源性卫星细胞相似，而与肌母细胞和储备细胞则明显不同。关键基因涉及Notch信号通路、早期应激反应、静止状态及细胞外基质等方面。
差异基因表达分析发现，idSCs与肌母细胞之间存在1,347个差异表达基因，idSCs与卫星细胞之间存在774个差异基因。功能富集分析显示，idSCs和卫星细胞共享并上调了多条与细胞粘附和细胞外基质相关的KEGG通路。相比之下，肌母细胞和idSCs在细胞周期和代谢通路中的激活水平较高，表明idSCs在转录特征上处于肌母细胞和卫星细胞之间的中间状态。
此外，通过Omni-ATAC-seq分析，研究还探讨了肌母细胞在转化为卫星细胞样细胞（idSCs）时的表观基因组动态变化。在不同时间点获得的idSC样本中，共识别出约40,000个与肌肉发生相关的染色质区域。结果显示，肌母细胞状态下的开放染色质区域在idSCs和卫星细胞中逐渐闭合，尤其是在第30天的idSCs中。无偏聚类分析将这些染色质区域分为五个类群，涉及肌肉发育、细胞外基质组织及细胞周期调节相关基因。
体内功能评估
研究还评估了idSCs在体内的功能。通过将晚期idSCs植入损伤肌肉中，评估其在体内的存活、整合和自我更新能力。使用表达荧光素酶和tdTomato的慢病毒感染肌母细胞，进行体内追踪和生物发光成像（BLI）。实验结果显示，idSCs在植入后具有显著的存活能力，体内辐射强度随时间显著增加，而肌母细胞的辐射强度逐渐降低。
21天后，idSCs在肌肉中的整合情况显著优于肌母细胞，表现为更多的tdTomato+肌纤维。idSCs还能有效填充卫星细胞小区，占卫星细胞的14%，而肌母细胞几乎未能生成Pax7+tdTomato+细胞。实验还表明，idSCs在经历多轮CTX损伤后仍能持续自我更新，支持肌肉再生。与新鲜分离的卫星细胞相比，idSCs在肌肉再生和卫星细胞小区再填充方面表现优越。
人类肌母细胞的转化
为了提高研究的临床相关性，研究人员从患者活检或商业来源获取人类肌母细胞，并在增强的无血清培养基中生成人类骨骼肌类器官（SkMOs），整个培养过程缩短为15天。研究发现，在SkMO形成过程中，PAX7+细胞的比例从肌母细胞阶段的3.5%±3%降至5%±1%，且在SkMOs中，仅少数PAX7+细胞（5%±2%）同时表达MyoD（仅占84%±2%）。此外，从增殖的肌母细胞转变为SkMOs时，EdU+细胞比例显著下降，表明肌母细胞经历去分化，维持Pax7表达但缺失MyoD表达。
结论
总体而言，本研究开发了一种从肌肉组织生成体外衍生卫星细胞（idSCs）的方法，这些细胞在小鼠体内移植后能够有效支持肌肉再生并恢复肌肉功能。研究揭示了idSCs的关键基因和信号通路，并成功从人类肌肉组织生成了类似卫星细胞的细胞，为肌肉疾病治疗提供了潜在应用。这一突破性的研究为未来肌肉疾病的治疗带来了新的希望。
